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食品微生物學檢驗 大腸菌群計數 征求意見稿



錄入時間:2016-1-28 14:41:33 來源:青島betway必威西汉姆联生物

1 範圍

本標準規定了食品中大腸菌群( Coliforms)計數的方法。

本標準適用於食品中大腸菌群的計數。

2 術語和定義

2.1 大腸菌群 coliforms 
在一定培養條件下能發酵乳糖、產酸產氣的需氧和兼性厭氧革蘭氏陰性無芽胞杆菌。
2.2 最可能數 most probable numberMPN

基於泊鬆分布的一種間接計數方法。

3 檢驗原理

3.1  MPN

MPN法是統計學和微生物學結合的一種定量檢測法。待測樣品經係列稀釋並培養後,根據其未生長的最低稀釋度與生長的最高稀釋度,應用統計學概率論推算出待測樣品中大腸菌群的最大可能數。

3.2 平板計數法

大腸菌群在固體培養基中發酵乳糖產酸在指示劑的作用下形成可計數的紅色或紫色帶有或不帶有沉澱環的菌落
設備和材料
除微生物實驗室常規滅菌及培養設備外,其他設備和材料如下:
4.1 恒溫培養箱: 36 ℃ ±℃。
4.2 冰箱: ℃~℃ 。
4.3 恒溫水浴箱: 46℃±1℃ 。
4.4 天平:感量 0.1 g
4.5 均質器。
4.6 振蕩器。
4.7 無菌吸管: 1 mL(具 0.01 mL 刻度)、 10 mL(具 0.1 mL 刻度)或微量移液器及吸頭。
4.8 無菌錐形瓶:容量 500 mL
4.9 無菌培養皿:直徑 90 mm
4.10 pH 計或 pH 比色管或精密 pH 試紙。
4.11 菌落計數器。
5 培養基和試劑

5.1 月桂基硫酸鹽胰蛋白腖( Lauryl Sulfate Tryptose, LST)肉湯:見附錄 中 A.1
5.2 煌綠乳糖膽鹽( Brilliant Green Lactose Bile, BGLB)肉湯:見附錄 中 A.2
5.3 結晶紫中性紅膽鹽瓊脂( Violet Red Bile Agar, VRBA):見附錄 中 A.3
5.4 磷酸鹽緩衝液:見附錄 中 A.4
5.5 無菌生理鹽水:見附錄 中 A.5
5.6 無菌 1 mol/L NaOH:見附錄 中 A.6
5.7 無菌 1 mol/L HCl:見附錄 中 A.7

第一法 大腸菌群 MPN 計數法

6 檢驗程序
大腸菌群MPN計數的檢驗程序見圖

圖1 大腸菌群 MPN 計數法檢驗程序

7 操作步驟
7.1 樣品的稀釋
7.1.1 固體和半固體樣品:稱取 25 g 樣品,放入盛有 225 mL 磷酸鹽緩衝液或生理鹽水的無菌均質杯內 ,8000 r/min10000 r/min 均質 1 min2 min,或放入盛有 225 mL 磷酸鹽緩衝液或生理鹽水的無菌均質袋中,用拍擊式均質器以6/s9/s拍打 1 min2 min,製成 1:10 的樣品勻液。
7.1.2 液體樣品:以無菌吸管吸取 25 mL 樣品置盛有 225 mL 磷酸鹽緩衝液或生理鹽水的無菌錐形瓶(瓶內預置適當數量的無菌玻璃珠)中充分振搖或置於機械振蕩器中振搖,充分混勻,製成 1:10 的樣品勻液。
7.1.3 樣品勻液的 pH 值應在 6.57.5 之間,必要時分別用 1 mol/L NaOH 或 1 mol/L HCl 調節。

7.1.4 用 1 mL 無菌吸管或微量移液器吸取 1:10 樣品勻液 1 mL,沿管壁緩緩注入 9 mL 磷酸鹽緩衝液或生理鹽水的無菌試管中(注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液麵),振搖試管或換用 支 1 mL 無菌吸管反複吹打,使其混合均勻,製成 1:100 的樣品勻液。
7.1.5 根據對樣品汙染狀況的估計,按上述操作,依次製成十倍遞增係列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋次,換用 1 mL無菌吸管或吸頭。從製備樣品勻液至樣品接種完畢,全過程不得超過15 min
7.2 初發酵試驗
每個樣品,選擇3個適宜的連續稀釋度的樣品勻液(液體樣品可以選擇原液),每個稀釋度接種3
管月桂基硫酸鹽胰蛋白腖( LST)肉湯,每管接種1mL(如接種量超過1 mL,則用雙料LST肉湯), 36℃ ±℃培養24 h±2 h,觀察倒管內是否有氣泡產生, 24 h±2 h產氣者進行複發酵試驗(證實試驗),如未產氣則繼續培養至48 h±2 h,產氣者進行複發酵試驗。未產氣者為大腸菌群陰性。
7.3 複發酵試驗(證實試驗)
用接種環從產氣的LST肉湯管中分別取培養物環, 移種於煌綠乳糖膽鹽肉湯( BGLB) 管中, 36 ℃ ±1℃培養48 h±2 h,觀察產氣情況。產氣者,計為大腸菌群陽性管。

7.4大腸菌群最可能數(MPN)的報告

7.3確證的大腸菌群LST陽性管數,檢索MPN表(見附錄B),報告每gmL)樣品中大腸菌群的

MPN值。

第二法 大腸菌群平板計數法

8 檢驗程序
大腸菌群平板計數法的檢驗程序見圖2

圖2 大腸菌群平板計數法檢驗程序

9 操作步驟

9.1 樣品的稀釋
7.1進行。
9.2 平板計數
9.2.1 選取2個~3個適宜的連續稀釋度每個稀釋度接種2個無菌平皿,每皿1 mL。同時取1 mL生理鹽水加入無菌平皿作空白對照。
9.2.2 及時將15 mL20 mL冷至46 ℃的結晶紫中性紅膽鹽瓊脂( VRBA)約傾注於每個平皿中。小心旋轉平皿,將培養基與樣液充分混勻,待瓊脂凝固後,再加3 mL4 mLVRBA覆蓋平板表層。翻轉平板,置於36 ℃ ±℃培養18 h24 h
8.3 平板菌落數的選擇
選取菌落數在 15 CFU150 CFU 之間的平板,分別計數平板上出現的典型和可疑大腸菌群菌落(如菌落直徑較典型菌落小)。典型菌落為紫紅色,菌落周圍有紅色的膽鹽沉澱環,菌落直徑為 0.5 mm 或更大。

9.4 證實試驗
從 VRBA 平板上挑取 10 個不同類型的典型和可疑菌落,分別移種於 BGLB 肉湯管內, 36 ℃ ±℃培養 24 h~48 h,觀察產氣情況。凡 BGLB 肉湯管產氣,即可報告為大腸菌群陽性。 
9.5 大腸菌群平板計數的報告
經最後證實為大腸菌群陽性的試管比例乘以9.3中計數的平板菌落數,再乘以稀釋倍數,即為每g
( mL)樣品中大腸菌群數。例: 10-4樣品稀釋液1 mL,在VRBA平板上有100個典型和可疑菌落,挑取其中10個接種BGLB肉湯管,證實有6個陽性管,則該樣品的大腸菌群數為: 100×6/10×104/g( mL=6.0×105CFU/g( mL)。

附  錄A
培養基和試劑

A.1 月桂基硫酸鹽胰蛋白腖(LST)肉湯
A.1.1 成分
胰蛋白腖或胰酪腖                           20.0 g
氯化鈉                                     5.0 g
乳糖                                       5.0 g
磷酸氫二鉀(K2HPO4)                      2.75 g
磷酸二氫鉀( KH2PO4)                     2.75 g
月桂基硫酸鈉                               0.1 g
蒸餾水                                     1 000 mL
pH 6.8±0.2
A.1.2 製法
將上述成分溶解於蒸餾水中,調節 pH。分裝到有玻璃小倒管的試管中,每管 10 mL。 121 ℃高壓滅菌 15 min
A.2 煌綠乳糖膽鹽(BGLB)肉湯
A.2.1 成分
蛋白腖                                      10.0 g
乳糖                                        10.0 g
牛膽粉( oxgalloxbile)溶液                200 mL
0.1%煌綠水溶液                              13.3 mL
蒸餾水                                      800 mL
pH 7.2±0.1
A.2.2 製法
將蛋白腖、乳糖溶於約500 mL蒸餾水中,加入牛膽粉溶液200 mL(將20.0 g脫水牛膽粉溶於200 mL蒸餾水中,調節pH7.07.5),用蒸餾水稀釋到975 mL,調節pH,再加入0.1%煌綠水溶液13.3 mL,用蒸餾水補足到1 000 mL,用棉花過濾後,分裝到有玻璃小倒管的試管中,每管10 mL。 121 ℃高壓滅菌15 min
A.3 結晶紫中性紅膽鹽瓊脂(VRBA)
A.3.1 成分
蛋白腖                                     7.0 g
酵母膏                                     3.0 g
乳糖                                       10.0 g
氯化鈉                                     5.0 g
膽鹽或3號膽鹽                             1.5 g
中性紅                                     0.03 g
結晶紫                                     0.002 g
瓊脂                                       15 g18 g
蒸餾水                                     1 000 mL
pH 7.4±0.1

A.3.2 製法
將上述成分溶於蒸餾水中,靜置幾分鍾,充分攪拌,調節pH。煮沸2 min,將培養基冷卻至45 ℃~
50 ℃傾注平板。使用前臨時製備,不得超過3 h
A.4 磷酸鹽緩衝液
A.4.1 成分
磷酸二氫鉀( KH2PO4)                        34.0 g
蒸餾水                                        500 mL
pH 7.2
A.4.2 製法
貯存液:稱取34.0 g的磷酸二氫鉀溶於500 mL蒸餾水中,用大約175 mL1 mol/L氫氧化鈉溶液調節pH,用蒸餾水稀釋至1 000 mL後貯存於冰箱。稀釋液:取貯存液1.25 mL,用蒸餾水稀釋至1 000 mL,分裝於適宜容器中, 121 ℃高壓滅菌15 min
A.5 無菌生理鹽水
A.5.1 成分
氯化鈉                                        8.5 g
蒸餾水                                        1000 mL
A.5.2 製法
稱取8.5g氯化鈉溶於1000 mL蒸餾水中, 121 ℃高壓滅菌15 min
A.6 1 mol/L NaOH
A.6.1 成分
NaOH                                         40.0 g
蒸餾水                                        1000 mL
A.6.2 製法
稱取40 g氫氧化鈉溶於1000 mL蒸餾水中, 121 ℃高壓滅菌15 min
A.7 1 mol/L HCl
A.7.1 成分
HCl                                          90 mL
蒸餾水                                       1000 mL
A.7.2 製法
移取濃鹽酸90 mL,用蒸餾水稀釋至1000 mL, 121 ℃高壓滅菌15 min

附  錄B

大腸菌群最可能數(MPN)檢索表

   B.1大腸菌群最可能數(MPN)檢索表

gmL)檢樣中大腸菌群最可能數(MPN)的檢索見表B.1

表B.1  大腸菌群最可能數(MPN)檢索表

陽性管數

MPN   

95%可信限

陽性管數

MPN

95%可信限

0.10

0.01

0.001

下限

上線

0.10

0.01

0.001

下限

上限

0

0

0

3.0

--

9.5

2

2

0

21

4.5

42

0

0

1

3.0

0.15

9.6

2

2

1

28

8.7

94

0

1

0

3.0

0.15

11

2

2

2

35

8.7

94

0

1

1

6.1

1.2

18

2

3

0

29

8.7

94

0

2

0

6.2

1.2

18

2

3

1

36

8.7

94

0

3

0

9.4

3.6

38

3

0

0

23

4.6

94

1

0

0

3.6

0.17

18

3

0

1

38

8.7

110

1

0

1

7.2

1.3

18

3

0

2

64

17

180

1

0

2

11

3.6

38

3

1

0

43

9

180

1

1

0

7.4

1.3

20

3

1

1

75

17

200

1

1

1

11

3.6

38

3

1

2

120

37

420

1

2

0

11

3.6

42

3

1

3

160

40

420

1

2

1

15

4.5

42

3

2

0

93

18

420

1

3

0

16

4.5

42

3

2

1

150

37

420

2

0

0

9.2

1.4

38

3

2

2

210

40

430

2

0

1

14

3.6

42

3

2

3

290

90

1000

2

0

2

20

4.5

42

3

3

0

240

42

1000

2

1

0

15

3.7

42

3

3

1

460

90

2000

2

1

1

20

4.5

42

3

3

2

1100

180

4100

2

1

2

27

8.7

94

3

3

3

1100

420

--

1:本表采用3個稀釋度[0.1g(mL)0.01g(mL)0.001g(mL)],每個稀釋度接種3管。

2:表內所列檢樣量如改用1g(mL)0.1g(mL)0.01g(mL)時,表內數字應相應降低10倍;如改用0.01g(mL)0.001g(mL)0.00001g(mL)時,則表內數字應相應增高10倍,其餘類推。

 

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