組織培養一般分為五個步驟：

培養基的成份隨植物的種類、外植體的類型、培養階段的不同而不同。一般來說，培養基應含有大量元素、微量元素、鐵鹽、維生素、激素、糖和瓊脂等物質，有時還在培養基中添加有機附加物，如活性炭、椰子汁等。培養基的配製按如下步驟進行：

（1）根據培養材料確定培養基。一般可先試用MS培養基，若不適，再改用其它培養基。

附：MS培養基——A組：（大量元素）（單位：mg·L^-1，下同）

NH₄NO₃ 1650 ；KNO₃ 900 ；CaCl₂ 440 ；MgSO₄·7H₂O 370；KH₂PO₄ 170

KI 0.83 ；H₃BO₃ 6.2 ；MnSO₄·H₂O 22.3 ； ZnSO₄·7H₂O 10.6

Na₂MoO₄·2H₂O 0.25 ；CuSO₄·5H₂O 0.025  ； CoCl₂·6H₂O 0.025

EDTA 37.3  ； FeSO₄·7H₂O 27.8

甘氨酸（C₂H₅NO₂） 2.0 ； 鹽酸硫胺素（VB₆） 0.1 ； 煙酸 0.5

吲哚乙酸（VB₁） 1-30 ； 鹽酸吡哆醇 0.5 ； 6-苄基氨基腺嘌呤（6-BA） 0.04-10 ； IAA（吲哚乙酸） 0.01-3

其他溶液的配製：1mol/L的NaOH溶液，0.1mg/mL的6-BA溶液，0.1mg/mL的IAA溶液，0.1mg/mL的2,4-D溶液，0.1mg/mL的KT溶液，0.1mg/Ml的ZT溶液。

（2）按照確定的培養基配方配製培養基，一般包括溶化瓊脂、加入蔗糖和母液、調整酸堿度、定容、分裝等步驟。

（3）對分裝好的培養基進行高壓滅菌，將滅菌好的培養基放入接種室中。

（1）外植體的切取及消毒。用於快速繁殖的外植體可以是種子、莖尖、葉片、花序等。外植體必須先進行消毒，其消毒方法是：從植株上切取所需的部分，用水衝洗幹淨，而後移入超淨工作台中用消毒劑（次氯酸鈉、氯化汞、酒精等）進行消毒，但不管使用什麽消毒劑，消毒後的外植體應該是無菌的，而其本身沒有被消毒劑殺死。

（2）將消毒後的外植體接種到培養基中，接種時要求迅速準確，防止交叉汙染。

消毒後的外植體在培養基上培養一段時間後可誘導出從芽、胚狀體、原球莖、根狀莖，這些培養材料稱為中間繁殖體。對中間繁殖體進行切割、繼代培養就可以進行中間繁殖體的增殖。中間繁殖體的增殖速度隨花卉的種類、培養基、培養條件的不同而異，因而對具體花卉需進行試驗，找到合適的繁殖條件，以達到“快繁”的目的。

當中間繁殖體增殖到一定數量後快速繁殖進入生芽、壯苗和生根階段。如果是通過從芽繁殖，則不需經過生芽直接進行壯苗、生根，如果是通過其它途徑則需先將中間繁殖體轉移到生芽培養基上，然後再轉移到壯苗生根培養基上。在壯苗生根培養基上，大多數花卉要分離成單苗。

對已經生根的試管苗及時移栽是花卉快繁的最後工作，而且也是十分關鍵的工作。由於試管苗是在無菌、有營養供給、適合光照、溫度和100%相對濕度環境中生長的，因而剛出瓶的試管苗對外麵環境不太適應，稍一不慎便會造成大量死苗。所以對剛出瓶的試管苗要給予特別的照顧，適當的溫度、弱光照、高的空氣濕度、適宜的基質及對病蟲害的有效控製是提高成活率的關鍵。