(一) 實驗目的
了解血球計數板的構造、計數原理和計數方法,用顯微鏡直接測定微生物總細胞數。
(二) 實驗原理
測定微生物細胞數量的方法很多,通常采用的有顯微直接計數法和稀釋平板計數法。
直接計數法適用於各種單細胞菌體的純培養懸浮液,如有雜菌或雜質,則難於直接測定。菌體較大的酵母菌或黴菌孢子可采用血球計數板,一般細菌則采用彼得羅夫·霍澤(Petrof Hausser)細菌計數板。兩種計數板的原理和部件相同、隻是細菌計數板較薄,可以使用油鏡觀察。而血球計數板較厚,不能使用油鏡,計數板下部的細菌難於區分。
血球汁數板是一塊特製的厚型載玻片,載玻片上有4條槽所構成的3個平台。中間的平台較寬,其中間又被一短橫槽分隔成兩半,每個半邊上麵各有一個計數區,計數區的刻度應有兩種:一種是計數區分為16個大方格(大方格用三線隔開),而每個大方格又分成25個小方格;另一種是一個計數區分成25個大方格(大方格之間用雙線分開),而每個大方格又分成16個小方格。但是不管計數區是哪一種構造,它們都有一個共同特點,即計數區都由400個小方格組成。
計數區邊長為1mm,則計數區的麵積為1mm2,每個小方格的麵積為1/400mm2。蓋上蓋玻片後,計數區的高度為0.1mm,所以計數區的體積為0.1mm3,每個小方格的體積為1/4000mm3。
使用血球計數板計數時,先要測定每個小方格中微生物的數量,再換算成每mL菌液(或每g樣品)中微生物細胞的數量。
已知:1mL體積=10mm×10mm×10mm=1000mm3
所以:1mL體積應含有小方格數為1000mm3/(1/4000mm3)=4x106個小方格。即係數K=4x106。因此:每mL菌懸液中含有細胞數=每個小格中細胞平均數(N) x係數(K) x菌液稀釋倍數(d)。
(三)實驗器材
(1)活材料:釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae )斜麵菌種或培養液。
(2)器材:顯微鏡、血球計數板、蓋玻片(22mm x 22mm)、吸水紙、計數器、滴管、擦鏡紙。
(四)實驗方法
(1)視待測菌懸液濃度,加無菌水適量稀釋(斜麵一般稀釋到10-2),以每小格的菌數可數為度。
(2)取潔淨的血球計數板一塊,在計數區上蓋上一塊蓋玻片。
(3)將酵母菌懸液搖勻,用滴管吸取少許,從計數板中間平台兩側的溝槽內沿蓋玻片的下邊緣滴入一小滴(不宜過多),讓菌懸液利用液體的表麵張力充滿計數區,勿使氣泡產生,並用吸水紙吸去溝槽中流出的多餘菌懸液。也可以將菌懸液直接滴加在計數區上,注意不要使計數區兩邊平台沾上菌懸液,以免加蓋蓋玻片後,造成計數區深度的升高。然後加蓋蓋玻片(勿使產生氣泡)。
(4)靜置片刻,將血球計數板置載物台上夾穩,先在低倍鏡下觀察到計數區後,再轉換高倍鏡觀察並計數。由於活細胞的折光率和水的折光率相近,觀察時應適當關小孔徑光闌並減弱光照的強度。
(5)計數時若計數區是由16個大方格組成,按對角線方位,數左上、左下、右上、右下的4個大方格(即100小格)的菌數。如果是25個大方格組成的計數區.除數上述四個大方格外,還需數中央1個大方格的菌數(即80個小格)。如菌體位於大方格的雙線上,計數時則數上線不數下線,數左線不數右線,以減少誤差。
(6)對於出芽的酵母菌,芽體達到母細胞大小一半時,即可作為兩個菌體計算。每個樣品重複計數2—3次(每次數值不應相差過大,否則應重新操作),求出每一個小格中細胞平均數(N),按公式計算出每mL(g)菌懸液所含酵母菌細胞數量。
(7)測數完畢,取下蓋玻片,用水將血球計數板衝洗幹淨,切勿用硬物洗刷或抹擦,以免損壞網格刻度。洗淨後自行晾幹或用吹風機吹幹,放入盒內保存。
上一篇:環境中微生物的觀察及從土壤中分離純化微生物
下一篇:土壤微生物分離與純化實驗原理和方法