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應用微生物改良法測定紅細胞葉酸的研究



錄入時間:2010-12-22 9:38:22 來源:中國論文下載中心

 

  摘 要  目的:研究微生物改良法測定紅細胞葉酸(RCF)的可靠性。方法:用本方法檢測不同疾病患者100例和健康自願者50例的紅細胞葉酸含量。對高、低兩個質控標準的精密度、穩定性及實驗相關性等指標進行評價。結果:本方法化學性能的評價表明:批內變異係數為2.228%3.620%,批間變異係數為5.12%7.51%。各廠家的試劑相關性良好(r=0.9544n=50)。50名健康自願者測定結果表明RCF的正常參考值為586.3±69.6ng/mL。結論:本方法測定結果準確、可靠且操作簡便,實驗條件簡單,適宜於推廣。

    關鍵詞  紅細胞葉酸;微生物改良法;巨幼細胞貧血

    血液中的葉酸水平異常偏低,除與葉酸缺乏的巨幼細胞貧血有關外,還與胎兒神經管缺陷有關,引起同型半胱氨酸血症,可影響血管功能和增加卒中危險。因而血液中的葉酸水平的檢測受到高度重視。測定葉酸的方法基本上是微生物改良法和競爭結合兩類,我們用微生物改良法對紅細胞葉酸(RCF)進行了初步的研究。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    1.1.1  菌株製備:購買耐氯黴素乳酸菌(NCIMB10463)凍幹菌株。將凍幹的菌株懸浮於5mL保養液37孵育18h;混勻取1滴加入新的5mL保養液,37孵育18h(該菌株可以在-4保存2W,用於菌株的繁殖)後;混勻取0.5mL加入5mL保養液,37孵育6h;用生理鹽水清洗5次,最後用5mL生理鹽水懸浮(簡稱清洗後6h菌株)。

    1.1.2  測量液:按培養基2.35g,氯黴素0.02gV-C0.1gTween-80110稀釋)0.1mL,去離子水100mL的比例配製,以5mL為單位分裝。

    1.1.3  保養液:每升測量液中加標準葉酸10mL,按5mL/支分裝於無菌帶塞試管,置-20可保存1年。標準葉酸濃度:10ng/mL

   1.3 測定樣本

    ①定值高值質控標準=2.252ng/mL,低值質控標準=1.761ng/mL;分裝後於-70保存,保證質控標準隻凍融1次。②病人標本,不同疾病患者100例及健康自願者50例,年齡25歲~40歲。所有標本均空腹,采肘靜脈血2mL3mL,置EDTA幹燥管內,按110比例稀釋在1%V-C液中(稱V-C血)於-20貯存。

    2 微生物測定法

    2.1.  按表1和表2操作配製孵育試管。表1 標準曲線管孵育前配製表2 紅細胞葉酸標本孵育前配製

    2.2.  上述試管在37孵育18h後,搖勻,用721-分光光度計(在波長λ=660mm處)比濁。以葉酸濃度為橫軸,以光密度值(OD值)為縱軸做出標準曲線。試管1和試管2OD值首先扣除同濃度空白對照管的OD值,然後由標準曲線查出該試管的葉酸值,標本的V-CRCFng/mL=(試管1葉酸值×0.04+試管2葉酸值×0.02/2。標本的紅細胞葉酸值(RCF)按以下公式進行計算:RCFng/mL=[(V-CRCF×10/紅細胞壓積]ng/mL

    3 結果

    3.1 精密度實驗

    取高、低值質控血清,平行測定20次,計算批內CV,低值血清CV=2.228%,高值血清CV=3.620%。連續測20d,計算批間CV,低值血清CV=5.12%,高值血清CV=7.51%

   3.2 穩定性實驗

    按照菌株製備方法將凍幹的菌株打開後,測定並繪製標準曲線圖,測定高值、低值質控的RCF;同時用保養液使菌株長期保存。並分別在第3d7d14d20d30d50d75d100d使用保養液的菌株繪製標準曲線圖,測定高值、低值質控的RCF值。高值質控的CV=5.18%、低值質控的CV=3.03%

3.3 相關實驗

    50份標本同時用本法與美國DPC公司提供的進口的葉酸(固相非煮沸雙相計數)放免試劑盒對RCF進行測定,相關係數r=0.9544 3.4 正常參考值

    選取50名年齡在25歲~40歲健康人標本用本方法進行紅細胞葉酸測定,用平均值±兩個標準差的方法進行統計計算正常參考值,測定結果表明RCF的正常參考值為(586.3±69.6ng/mL

    4 討論

    葉酸在體內代謝極為重要的單碳轉運中起著關鍵性作用。血液中的葉酸缺乏除與巨幼細胞貧血有關外,還與胎兒神經管缺陷有關,引起同型半胱氨酸血症[1] ,可影響血管功能和增加卒中危險 [23] 。由於紅細胞內所含葉酸濃度比血清所含

    葉酸濃度高10倍~20倍,因而紅細胞葉酸比血清葉酸更能代表組織內葉酸水平,當組織內葉酸水平已經缺乏,但尚未出現巨幼細胞貧血時,紅細胞葉酸的測定對葉酸缺乏作出的決定更有價值 [4 ;而且血清葉酸的結果易受多種因素的影響,如:炎症、肝病、腫瘤等 [5] 。因此雖然血清葉酸降低代表早期葉酸缺乏,但紅細胞葉酸減低,不受外來因素的影響,確實反映了組織葉酸水平的減低。

測定葉酸的方法基本上是微生物改良法和競爭結合法兩類,後者操作簡單、靈敏、但是價格昂貴,目前國內多數用於測定血清葉酸(SF)。當肝腎功能受損時,葉酸可以聚合。這種聚合體用競爭結合法不能測定(除非這種聚合被解開);但微生物改良法可以測定血液中總葉酸值(包括上述聚合體),因此用微生物改良法能滿足臨床測定肝、腎受損病人的總葉酸值。微生物改良法是經典的方法,材料來源廣泛,並且用保養液可以使菌株長期保存。如果保存不當,致使菌株受雜菌汙染或死亡,可以重新購買凍幹菌株,十分簡單便利地重新建立該實驗;不需要購買特殊儀器;對儀器和實驗條件要求較低;適用於大批標本測定。本實驗觀察了長期保存的菌株,其實驗穩定性良好;與美國DPC公司提供的進口的葉酸(固相非煮沸雙相計數)放免試劑相關性顯著。因此便於在臨床上推廣使用。

作者:李建蘭 楊波 冉家彥《長治醫學院學報》

 

    參考文獻

    1 Siri PWVerhoef PKok Fj.Vitamin B6B12a and folate:Associ-ation with plasmatotal homocysteine and risk of coronary at herosclerosisJ.J Am Coll Nutr1998175:435441.

    2 Robinson KArheart KRefsum Het al.Low circulating folate and vitamin B6concentrations:risk factors for strokeperipheral vascu-lar diseaseand coronary artery diseaseJ.Circulation199897:437443.

    3 Morrison HISchaubel DDesmeules Met al.Serum folate and risk of fatal coronary heart disease J.JAMA1996275:18931896.

    4 Hill PW.Evaluntion of a commercial radioisotopic kitfor folate as-says.J Clin Pathol197730:449.

5] 楊慧敏,陳覺凝,餘靈,等.82名正常兒童紅細胞葉酸、堿性鐵蛋白水平測定及臨床意義.中國小兒血液,19983:260.

 

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