1、單層細胞的裂解
a)吸出培養液,以7ml用冰預冷的無鈣鎂離子磷酸緩衝鹽溶液PBS衝洗細胞培養皿內的單層細胞,重複1次,將平板置於冰上直至所有單層細胞衝洗完畢。也可將平板放在一塊鋁板上,再將鋁板置於冰盤上。
b)直徑為
c)加0.5ml蛋白酶消化緩衝液,用刮棒混勻粘稠狀裂解物並將其刮到平板的邊緣。(蛋白酶消化緩衝液配方:0.2mol/L Tris.Cl(pH8.0),25mmol/L EDTA(pH8.0),0.3mol/L NaCl,2% SDS)
d)用裝有21號針頭的皮下注射器抽吸細胞裂解物,再將其注入聚丙烯管內。重複3-4次,剪切DNA。
e)加蛋白酶K至終濃度為200μg/ml,充分混勻後置於
2、懸浮培養的細胞或組織單細胞懸液的裂解
a)於
b)估計細胞沉澱的體積,用10-20倍體積的RNA提取緩衝液重懸之。
c)加入與步驟b)所加RNA提取緩衝液體相同的蛋白酶消化緩衝液,用振蕩器迅速混勻。用裝有21號針頭的皮下注射器抽吸細胞裂解物,再將其注入聚丙烯管內。重複3-4次,剪切DNA。
d)加蛋白酶K至終濃度為200μg/ml,充分混勻後置於
二、提取步驟
1、用等體積酚:氯仿抽提1次,以去除蛋白質。
2、用吊桶式轉頭於室溫以
3、於
4、每個直徑為
5、分別按10mmol/L和0.1mmol/L的深度加MgCl2和二硫蘇糖醇(DTT),然後分別按1000單位/或10mmol/L 的終深度加台盤RNA酶抑製劑或氧釩核苷複合物。
6、加入無RNA酶的胰DNA酶I至終濃度為2μg/ml,混勻,於
7、分別按10mmol/L和0.2%的終濃度加EDTA和SDS。
8、用等體積酚:氯仿抽提1次。
9、於室溫以
10、用微量離心機於
11、吸出所有的乙醇,將打開管蓋的離心管在實驗台放置幾分鍾,讓最後殘存的痕量乙醇揮發幹淨。
12、用200μl TE(pH7.6)重溶沉澱,加500μl乙醇,於-
三、注意事項
1、測定最終所得溶液的OD260值可以確定RNA的濃度。取10μl乙醇/TE混合液離心沉澱RNA,以400水重溶,測定OD260值,OD260=1的RNA溶液每毫升約含40μg RNA。
2、如果需要,可用oligo(dT)-纖維素層析法從所製備的細胞總RNA中純化無寡脫氧核糖核苷酸汙染的mRNA或購買試劑盒進行mRNA的純化。
3、某些情況下(例如從感染了DNA病毒或用DNA轉染的細胞中製備RNA時),必須從細胞總RNA中去除寡脫氧核核苷酸。否則,當用這種RNA構建cDNA庫或進行引物延伸反應時應會出問題,反轉錄過程中法染的模板DNA片段可能會與RNA雜交而充當引物,從而導致物定mRNA5'末端定位的錯誤或產生截短的cDNA克隆。
a)步驟12後,加200μl 3mol/L乙酸鈉(pH5.2),用自動微量移液器反複吹吸,以重懸核酸沉澱,將懸浮液移至另一個滅菌的微量離心管內。
b)用微量離心機於室溫以
c)棄上清液,用200μl TE(pH7.6)重溶沉澱。加入20μl 3mol/L乙酸鈉(pH5.2),分混勻,加入550μl用冰預冷的乙醇。混勻溶液,在冰上驟冷30分鍾。用微量離心機於
d)棄上清液,用300μl TE(pH7.6)重溶沉澱,加1ml乙醇,-
回收RNA時,隻需取出1小份貯存液,加3mol乙酸鈉(pH5.2)至終濃度為0.3mol/L充分混勻,用微量離心機於
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