將侯選重組子進行酶切分析,驗證其結構。比如:PacI酶切後通常得到約30kb的片段和一個3.0或4.5kb的小片段。小片段的大小因重組位置在左臂還是複製子而不同。建議同時用克隆基因的內切酶進行分析,鑒定是否含有插入基因。挑選最佳陽性重組子轉入DH5α中進行擴增:轉化DH5α隻需1-5ul小量製備的重組子。這一步對於擴增時保持重組DNA的結構是必需的,因為AdEasyTM這樣的大質粒在recA+細菌株如BJ5183中是不穩定的,會迅速出現缺失,而在DH5α中能很容易地獲得大量DNA。
1. 將DH5α感受態細胞和電穿孔杯置於冰上。
2. 將1-5ul DNA加入40ul DH5α感受態細胞中,DNA必須用水溶,避免含有離子。
3. 將DH5α感受態細胞轉入2mm電穿孔杯,防止形成氣泡。
4. 按照說明轉化DH5α:Bio-Rad儀器一般使用的參數為:200 Ohms、25uF、2.5KV;BTX儀器則為:50 Ohms、2.5KV、C=0。
5. 將轉化混合液重懸於1ml LB中。
6. 轉入15-50ml離心管中,37℃振蕩培養60分鍾。
7. 培養後用LB按一定梯度稀釋轉化的DH5α(1:10、1:100和1:1000)
8. 取100ul轉化液鋪在LB/Kan(50ug/ml)板上,37℃培養24小時。未用的轉化液可在4℃保存-2周。
9. 每個重組子挑1~3個克隆轉入5ml LB擴增,以備有足夠量質粒。這時,用內切酶再次分析重組DNA,以確證含有插入基因,以及重組子的穩定性。
10. 用柱純化試劑盒製備至少5ug高質量的重組DNA。
11. 取5ug質粒用PacI消化,酚/氯仿抽提一遍,乙醇沉澱後在無菌條件下溶於50ul 0.1×TE溶液。具體要求參見磷酸鈣技術一章中有關轉染前DNA製備的內容。
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