一、基本原理
平板菌落計數法是根據微生物在固體培養基上所形成的一個菌落是由一個單細胞繁殖而成的現象進行的，也就是說一個菌落即代表一個單細胞。計數時，先將待測樣品作一係列稀釋，再取一定量的稀釋菌液接種到培養皿中，使其均勻分布於平皿中的培養基內，經培養後，由單個細胞生長繁殖形成菌落，統計菌落數目，即可換算出樣品中的含菌數。
這種計數法的優點是能測出樣品中的活菌數。此法常用於某些成品檢定（如殺蟲菌劑），生物製品檢定以及食品、水源的汙染程度的檢定等。但平板菌落計數法的手續較繁，而且測定值常受各種因素的影響。
二、器材
大腸杆菌懸液，牛肉膏蛋白腖培養基， 1ml無菌吸管，無菌平皿，盛有4． 5 ml無菌水的試管，試管架和記號筆等。
三、操作步驟
1．編號：
取無菌平皿 9套，分別用記號筆標明10-4、10-5、10-6各3套。另取6支盛有4．5ml無菌水的試管，排列於試管架上，依次標明10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6。
2．稀釋
用1ml無菌吸管精確地吸取0．5ml大腸杆菌懸液放入10-1的試管中，注意吸管尖端不要碰到液麵，以免吹出時，管內液體外溢。然後仍用此吸管將管內懸液來回吸吹三次，吸時伸入管底，吹時離開水麵，使其混合均勻。另取一支吸管自10-1試管吸0．5ml放入10-2試管中，吸吹三次，……其餘依次類推。整個稀釋過程如圖Ⅷ-3。
3．取樣
用3支1ml無菌吸管分別精確地吸取10-4、10-5、10-6的稀釋菌液0．2ml，對號放入編好號的無菌培養皿中。
4．倒平板
於上述盛有不同稀釋度菌液的培養皿中，倒入溶化後冷卻至45℃左右的肉膏蛋白腖瓊脂培養基約10—15ml，置水平位置，迅速旋動混勻，待凝固後，倒置於37℃溫室中培養。
5．計數
培養24小時後，取出培養皿，算出同一稀釋度三個平皿上的菌落平均數，並按下列公式進行計算：
每毫升中總活菌數=同一稀釋度三次重複的菌落平均數×稀釋倍數×5
一般選擇每個平板上長有30—300個菌落的稀釋度計算每毫升的菌數最為合適。同一稀釋度的三個重複的菌數不能相差很懸殊。由10-4、10-5、10-6三個稀釋度計算出的每毫升菌液中總活菌數也不能相差懸殊，如相差較大，表示試驗不精確。
平板菌落計數法，所選擇倒平板的稀釋度是很重要的，一般以三個稀釋度中的第二稀釋度倒平板所出現的平均菌落數在50個左右為最好。
平板菌蓓計數法的操作除上述的以外，還可用塗布平板的方法進行。二者操作基本相同，所不同的是塗布平板法是先將牛肉膏蛋白腖瓊脂培養基溶化後倒平板，待凝固後編號，並於 37℃溫室中烘烤30分鍾左右，使其幹燥，然後用無菌吸管吸取 0．2ml菌液對號接種於不同稀釋度編號的培養皿中的培養基上，再用無菌玻璃刮棒將菌液在平板上塗布均勻，平放於實驗台上20—30分鍾，使菌液滲透入培養基內，然後再倒置於37℃的溫室中培養。
四、實驗報告
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